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Zur Ei- und Embryonalentwicklung des HydroidpolypenEudendrium armatum
On egg and embryonic development of the hydroid polypEudendrium armatum. A light and electron microscopic study
Eine licht- und elektronenmikroskopische Untersuchung
Helgoländer wissenschaftliche Meeresuntersuchungen volume 25, pages 93–125 (1973)
Abstract
Oocytes ofEudendrium armatum originate in the branching stalks from undifferentiated ectoderm cells, in younger as well as in older parts, individually or in groups — prior to the development of blastostyles. Oocyte migration is caused by an autonomous activity. Possible interrelationships between oogenesis and the migration of oocytes on the one hand, and the development of gonozoids on the other are discussed. Cleavage is complete, at least from the eighth nucleus stage onwards. Controversial opinions about cleavage in various species ofEudendrium are discussed, with special reference to the problem of the “syncytial cleavage” and areas of “liquefied yolk”. InE. armatum, the latter is regarded as an artefact of fixation. Egg shell formation, function and retraction of the spadix and embryogenesis are described.
Zusammenfassung
1. Die Oocyten-, Blastostyl- und Embryonalentwicklung vonEudendrium armatum Tichomirov wurde licht- und elektronenmikroskopisch untersucht.
2. Oocyten entstehen einzeln oder in dichter Lagerung aus undifferenzierten Zellen des Ektoderms in jüngeren sowie älteren Hydrocaulusabschnitten. Bereits vor der Blastostylknospung sind im Hydrocaulus zahlreiche Oocyten vorhanden. Gesetzmäßige Lagebeziehungen zwischen den Orten der Oocytenentstehung („Keimzonen“) und dem Verzweigungssystem lassen sich nicht feststellen. Das Wandern der Oocyten im Hydrocaulus kann am lebenden Stöckchen verfolgt werden.
3. Blastostyle sind von Nährpolypen im Knospenzustand durch in ihren Gastralraum eingewanderte Oocyten und später durch ihre Spadixbildung unterscheidbar. Die möglichen Wechselbeziehungen zwischen Oogenese und Oocytenwanderung einerseits und Blastostylen andererseits werden diskutiert.
4. Während der Vitellogenese wird vom Spadixentoderm granulöses Material — möglicherweise Glykogen — an die Oocyte abgegeben. Das Spadixentoderm hat durch Zellausläufer direkten Kontakt mit der Oocyte.
5. Nach der Befruchtung bildet die Oocyte eine Eihülle. Das Material dieser Eihülle entspricht wahrscheinlich der Peridermsubstanz.
6. Die Eihülle wird gleichzeitig mit dem Periderm unterhalb des Blastostyls verlötet. Dies geschieht in Wechselbeziehung zu einer Abhebung und Retraktion des Spadix vom Ei. Danach bleibt die Stützlamella aus dem Spadixbereich als gefaltetes Paket in der Gastralwand des Blastostyls liegen. Der fibrilläre Randsaum ist weitgehend ungestört. Es wird diskutiert, ob die Myoepithelzellen ihre Bindung an die Stützlamelle lösen und gegebenenfalls wieder knüpfen können.
7. Die Furchung verläuft — zumindest vom 8-Kern-Stadium ab — total. Der Beginn der Durchfurchung wurde stets in zeitlicher Verzögerung zu den ersten Kernteilungen beobachtet. Zellgrenzen wurden frühestens im 4-Kern-, spätestens im 8-Kern-Stadium gefunden. Die widersprüchlichen Angaben über totale, syncytiale und superfizielle Furchung in der GattungEudendrium werden an Hand der Befunde diskutiert.
8. Am Ende der Vitellogenese und zu Beginn der Embryonalentwicklung werden homogene Dotterbereiche in — je nach Fixierung unterschiedlicher — Verbreitung gefunden. In solchen „Verflüssigungsbereichen“ liegt der Komplexdotter nicht in von Membranen umgrenzten Tröpfchen (Vesikeln) vor. Diese Bildung wird als Fixierungsartefakt gedeutet.
9. Die histologische Differenzierung beginnt bereits in der späten Furchung parallel zur Anlage der Körperschichten. Der beschriebene Entstehungsmodus der Zweischichtigkeit kann als Moruladelamination bezeichnet werden.
Abbreviations
- B:
-
Bakterium
- Bl:
-
Blastostyl
- Cb:
-
Cnidoblast
- Ci:
-
Cilium
- Ch:
-
Chromatin
- dEhG:
-
dunkle Eihüllen-Grana
- Dm:
-
Doppelmembran
- Do:
-
Komplexdotter
- „Drg“:
-
„Drüsenring“
- Drz:
-
Grana-haltige Drüsenzellen
- Eh‚:
-
Eihüllenschicht I
- Eh„:
-
Eihüllenschicht II
- Ek:
-
Ektoderm
- Em:
-
Extrusionsmaterial
- Em‚:
-
vermutliches Em, von Doppelmembran umgeben
- En:
-
Entoderm
- F:
-
Filamente
- Fa:
-
Fixierung nachFahrenbach
- f.Ch:
-
fibrilläres Chromatin
- Fp:
-
Freßpolyp
- F.Stl:
-
Fibrillen der Stützlamelle
- Fs.Stl:
-
Fibrillensaum der Stützlamelle
- γ-C:
-
glatte Membranen
- G:
-
Gastralraum
- Gl:
-
vermutliches Glycogen
- Go:
-
Golgi-Apparat
- Gr:
-
strukturiertes Granum
- hEhG:
-
helle Eihüllen-Grana
- I-Z:
-
I-Zelle
- k.Ch:
-
kondensiertes Material innerhalb des fibrillären Chromatin
- Mf:
-
Myofibrillen
- Mi:
-
OsO4 nachMillonig
- Mit:
-
Mitochondrium
- N:
-
Nucleus
- Nl:
-
Nucleolus
- Nm:
-
Kernmembran
- Np:
-
Kernporen
- O:
-
Oocyte
- Pa:
-
OsO4 nachPalade
- Pd':
-
äußeres Periderm
- Pdb:
-
Peridermbildungszone
- PdG:
-
Peridermbildungs-Grana
- hPdG:
-
helle Peridermbildungs-Grana
- dPdG:
-
dunkle Peridermbildungs-Grana
- p.f:
-
pars fibrosa des Nucleolus
- p.g:
-
pars granulosa des Nucleolus
- Psp:
-
pseudopodienartiger Ausläufer einer Oocyte
- R:
-
Ribosomen
- Sp:
-
Spadix
- Sp.R:
-
Spadix in Retraktion
- Stl:
-
Stützlamelle
- StM:
-
Styrol Methacrylat
- Sz:
-
Schleimzellen
- V:
-
Vesikel und V-reihen
- /V:
-
Vestopal
- „Verfl“:
-
Dotter-„Verflüssigungszone“
- Wp:
-
Wehrpolyp
- X:
-
peripherer Bereich ohne Zellorganelle
- Zm:
-
Zellmembran
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Wasserthal, W. Zur Ei- und Embryonalentwicklung des HydroidpolypenEudendrium armatum . Helgolander Wiss. Meeresunters 25, 93–125 (1973). https://doi.org/10.1007/BF01609963
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DOI: https://doi.org/10.1007/BF01609963